[صفحه اصلی ]   [Archive] [ English ]  
:: صفحه اصلي :: درباره نشريه :: آخرين شماره :: تمام شماره‌ها :: جستجو :: ثبت نام :: ارسال مقاله :: تماس با ما ::
بخش‌های اصلی
صفحه اصلی::
اطلاعات نشریه::
آرشیو مجله و مقالات::
برای نویسندگان::
برای داوران::
ثبت نام و اشتراک::
تماس با ما::
تسهیلات پایگاه::
بایگانی مقالات زیر چاپ::
فهرست داوران همکار::
::
جستجو در پایگاه

جستجوی پیشرفته
..
دریافت اطلاعات پایگاه
نشانی پست الکترونیک خود را برای دریافت اطلاعات و اخبار پایگاه، در کادر زیر وارد کنید.
..
ISSN
شاپای آنلاین: ISSN 2676-7309
شاپای چاپی: ISSN 2383-1367
..




 
..
:: دوره 9، شماره 2 - ( 1401 ) ::
جلد 9 شماره 2 صفحات 108-95 برگشت به فهرست نسخه ها
بررسی مقاومت ژنتیکی برخی ارقام نخود (.Cicer arietinum L) ایرانی به علف‌کش‌ پرسوئیت
سید محسن سهرابی ، سید کریم موسوی*
بخش تحقیقات گیاه‌پزشکی، مرکز تحقیقات و آموزش کشاورزی و منابع طبیعی استان لرستان، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، خرم‌آباد، ایران ، k.mousavi@areeo.ac.ir
چکیده:   (3749 مشاهده)
نخود (Cicer arietinum L.) یکی از مهم‌ترین محصولات زراعی در سطح جهان است. نخود پس از لوبیا و نخود فرنگی مهم‌ترین لگوم دانه‌ای فصل سرد است. علف‌های هرز یکی از مهم‌ترین تهدید کنندگان تولید نخود در سرتاسر جهان هستند. به‌علت حساسیت نخود به علف‌کش‌ها، عمده‌ی مصرف علف‌کش‌ها به‌صورت پیش‌رویشی بوده و استفاده از علف‌کش‌های پس رویشی محدود است. بنابراین، ارقام بومی نخود متحمل به علف‌کش که انعطاف‌پذیری بالاتری برای استفاده علف‌کش‌های پس‌رویشی دارند، برای بهبود بازده این محصول مورد نیاز هستند. در این پژوهش، با استفاده از روش زیست‌سنجی بذر و واکنش PCR، مکانیسم‌های مقاومت ارقام نخود ایرانی نسبت به علف‌کش‌ پرسوئیت مورد بررسی قرار گرفت. نتایج این مطالعه تنوع ژنوتیپی و فنوتیپی قابل‌توجهی را برای تحمل به علف‌کش‌ پرسوئیت بین ارقام مختلف نخود ایرانی نشان داد. نتایج بررسی مکانیسم مقاومت ژنتیکی نسبت به علف‌کش‌ پرسوئیت نشان داد که پروتئین‌های هدف این علف‌کش یعنی ALS1 و ALS2 در تمامی ارقام مورد بررسی با هم و با توالی‌های مرجع موجود در بانک ژن تفاوتی نداشته و این اثبات می‌کند که مقاومت موجود در ارقام مختلف گیاه نخود نسبت به علف‌کش پرسوئیت در اثر مکانیسم مقاومت محل هدف ایجاد نشده و احتمالاً از مکانیسم مقاومت غیرمحل هدف پیروی می‌کند. ارقام برتر (Bivanij، Aksou، Mansour، TDS-Maragheh90-400 و TDS-Maragheh90-358) حاصل از این پژوهش می‌توانند به کشاورزان توصیه شده و همچنین به‌عنوان والد در آزمایش‌های بهنژادی برای ایجاد ارقام نخود با مقاومت طبیعی به علف‌‌کش پیشنهاد شوند.
واژه‌های کلیدی: ارقام مقاوم، پروتئین‌های هدف، علف‌کش‌های پس‌رویشی، علف‌های هرز، مقاومت محل هدف
متن کامل [PDF 1286 kb]   (885 دریافت)    
نوع مطالعه: پژوهشي | موضوع مقاله: ژنتیک مولکولی
فهرست منابع
1. Avila‐Garcia, W.V., Sanchez‐Olguin, E., Hulting, A.G. and Mallory‐Smith, C. (2012). Target‐site mutation associated with glufosinate resistance in Italian ryegrass (Lolium perenne L. ssp. multiflorum). Pest Management Science, 68: 1248-1254. [DOI:10.1002/ps.3286] [PMID]
2. Beckie, H.J., Heap, I.M., Smeda, R.J. and Hall, L.M. (2000). Screening for herbicide resistance in weeds. Weed Technology, 14: 428-445. [DOI:10.1614/0890-037X(2000)014[0428:SFHRIW]2.0.CO;2]
3. Beckie, H.J. and Tardif, F.J. (2012). Herbicide cross resistance in weeds. Crop Protection, 35: 15-28. [DOI:10.1016/j.cropro.2011.12.018]
4. Beste, C. (1983) Herbicide Handbook of the Weed Science Society of America. Weed Science Society of America, KS, USA.
5. Busi, R., Vila-Aiub, M.M. and Powles, S. (2011). Genetic control of a cytochrome P450 metabolism-based herbicide resistance mechanism in Lolium rigidum. Heredity, 106: 817-824. [DOI:10.1038/hdy.2010.124] [PMID] [PMCID]
6. Cummins, I., Bryant, D.N. and Edwards, R. (2009). Safener responsiveness and multiple herbicide resistance in the weed black‐grass (Alopecurus myosuroides). Plant Biotechnology Journal, 7: 807-820. [DOI:10.1111/j.1467-7652.2009.00445.x] [PMID]
7. Cummins, I., Cole, D.J. and Edwards, R. (1999). A role for glutathione transferases functioning as glutathione peroxidases in resistance to multiple herbicides in black‐grass. The Plant Journal, 18: 285-292. [DOI:10.1046/j.1365-313X.1999.00452.x] [PMID]
8. Cummins, I., Wortley, D.J., Sabbadin, F., He, Z., Coxon, C.R., Straker, H.E., Sellars, J.D., Knight, K., Edwards, L. and Hughes, D. (2013). Key role for a glutathione transferase in multiple-herbicide resistance in grass weeds. Proceedings of the National Academy of Sciences, 110: 5812-5817. [DOI:10.1073/pnas.1221179110] [PMID] [PMCID]
9. Dayan, F.E., Daga, P.R., Duke, S.O., Lee, R.M., Tranel, P.J. and Doerksen, R.J. (2010). Biochemical and structural consequences of a glycine deletion in the α-8 helix of protoporphyrinogen oxidase. Biochimica et Biophysica Acta (BBA)-Proteins and Proteomics, 1804: 1548-1556. [DOI:10.1016/j.bbapap.2010.04.004] [PMID]
10. Délye, C. (2013). Unravelling the genetic bases of non‐target‐site‐based resistance (NTSR) to herbicides: a major challenge for weed science in the forthcoming decade. Pest Management Science, 69: 176-187. [DOI:10.1002/ps.3318] [PMID]
11. Délye, C., Jasieniuk, M. and Le Corre, V. (2013). Deciphering the evolution of herbicide resistance in weeds. Trends in Genetics, 29: 649-658. [DOI:10.1016/j.tig.2013.06.001] [PMID]
12. Délye, C., Menchari, Y., Michel, S. and Darmency, H. (2004). Molecular bases for sensitivity to tubulin-binding herbicides in green foxtail. Plant Physiology, 136: 3920-3932. [DOI:10.1104/pp.103.037432] [PMID] [PMCID]
13. Délye, C., Zhang, X.Q., Michel, S., Matéjicek, A. and Powles, S.B. (2005). Molecular bases for sensitivity to acetyl-coenzyme A carboxylase inhibitors in black-grass. Plant Physiology, 137: 794-806. [DOI:10.1104/pp.104.046144] [PMID] [PMCID]
14. Dong, H., Wang, D., Bai, Z., Yuan, Y., Yang, W., Zhang, Y., Ni, H. and Jiang, L. (2020). Generation of imidazolinone herbicide resistant trait in Arabidopsis. Plos One, 15: e0233503. [DOI:10.1371/journal.pone.0233503] [PMID] [PMCID]
15. Doyle, J.J. (1987). A rapid DNA isolation procedure for small quantities of fresh leaf tissue. Phytochemical Bulletin, 19: 11-15.
16. FAOSTAT. (2018). FAOSTAT statistical database. http://faostat.fao.org. Accessed 10 January 2022.
17. Gaines, T.A., Zhang, W., Wang, D., Bukun, B., Chisholm, S.T., Shaner, D.L., Nissen, S.J., Patzoldt, W.L., Tranel, P.J. and Culpepper, A.S. (2010). Gene amplification confers glyphosate resistance in Amaranthus palmeri. Proceedings of the National Academy of Sciences, 107: 1029-1034. [DOI:10.1073/pnas.0906649107] [PMID] [PMCID]
18. Gaur, P., Jukanti, A., Samineni, S., Chaturvedi, S., Singh, S., Tripathi, S., Singh, I., Singh, G., Das, T. and Aski, M. (2013). Large genetic variability in chickpea for tolerance to herbicides imazethapyr and metribuzin. Agronomy, 3: 524-536. [DOI:10.3390/agronomy3030524]
19. Gupta, M., Bindra, S., Sood, A., Singh, I., Singh, G., Gaur, P., Chaturvedi, S., Dixit, G. and Singh, S. (2018). Identifying new sources of tolerance to post emergence herbicides in chickpea (Cicer arietinum L.). Journal of Food Legumes, 31: 5-9.
20. Han, H., Yu, Q., Purba, E., Li, M., Walsh, M., Friesen, S. and Powles, S.B. (2012). A novel amino acid substitution Ala‐122‐Tyr in ALS confers high‐level and broad resistance across ALS‐inhibiting herbicides. Pest Management Science, 68: 1164-1170. [DOI:10.1002/ps.3278] [PMID]
21. Iquebal, M.A., Soren, K.R., Gangwar, P., Shanmugavadivel, P., Aravind, K., Singla, D., Jaiswal, S., Jasrotia, R.S., Chaturvedi, S.K. and Singh, N.P. (2017). Discovery of putative herbicide resistance genes and its regulatory network in chickpea using transcriptome sequencing. Frontiers in Plant Science, 8: 958. [DOI:10.3389/fpls.2017.00958] [PMID] [PMCID]
22. Jefferies, L. (2014). Responses of selected chickpea cultivars to imidazoline herbicide. M.Sc. Thesis, University of Saskatchewan, Saskatchewan, Canada.
23. Linda, P., Kim, Y.S. and Tong, L. (2010). Mechanism for the inhibition of the carboxyltransferase domain of acetyl-coenzyme A carboxylase by pinoxaden. Proceedings of the National Academy of Sciences, 107: 22072-22077. [DOI:10.1073/pnas.1012039107] [PMID] [PMCID]
24. Lyon, D.J. and Wilson, R.G. (2005). Chemical weed control in dryland and irrigated chickpea. Weed Technology, 19: 959-965. [DOI:10.1614/WT-05-013R.1]
25. Mithila, J., McLean, M.D., Chen, S. and Christopher Hall, J. (2012). Development of near‐isogenic lines and identification of markers linked to auxinic herbicide resistance in wild mustard (Sinapis arvensis L.). Pest Management Science, 68: 548-556. [DOI:10.1002/ps.2289] [PMID]
26. Patzoldt, W.L., Hager, A.G., McCormick, J.S. and Tranel, P.J. (2006). A codon deletion confers resistance to herbicides inhibiting protoporphyrinogen oxidase. Proceedings of the National Academy of Sciences, 103: 12329-12334. [DOI:10.1073/pnas.0603137103] [PMID] [PMCID]
27. Petit, C., Bay, G., Pernin, F. and Delye, C. (2010). Prevalence of cross‐or multiple resistance to the acetyl‐coenzyme A carboxylase inhibitors fenoxaprop, clodinafop and pinoxaden in black‐grass (Alopecurus myosuroides Huds.) in France. Pest Management Science, 66: 168-177. [DOI:10.1002/ps.1851] [PMID]
28. Powles, S.B. (2018). Herbicide Resistance in Plants: Biology and Biochemistry. CRC Press, FL, USA. [DOI:10.1201/9781351073189]
29. Prakash, N.R., Singh, R.K., Chauhan, S., Sharma, M.K., Bharadwaj, C., Hegde, V., Jain, P., Gaur, P. and Tripathi, S. (2017). Tolerance to post-emergence herbicide Imazethapyr in chickpea. Indian Journal of Genetics and Plant Breeding, 77: 400-407. [DOI:10.5958/0975-6906.2017.00054.2]
30. Rekha, K.B., Jayalakshmi, V., T., Srinivas, M.S.R. and Umamaheswari, P. (2017). Genetic variability for selective tolerance to imazethpyr in chickpea (Cicer arietinum L.). Journal of Food Legumes, 30: 30-35.
31. Rizwan, M. and Akhtar, S. (2015). Development of herbicide resistant crops through induced mutations. Advancements in Life Sciences, 3: 01-08.
32. Salas, R.A., Dayan, F.E., Pan, Z., Watson, S.B., Dickson, J.W., Scott, R.C. and Burgos, N.R. (2012). EPSPS gene amplification in glyphosate‐resistant Italian ryegrass (Lolium perenne ssp. multiflorum) from Arkansas. Pest Management Science, 68: 1223-1230. [DOI:10.1002/ps.3342] [PMID]
33. Sathasivan, K., Haughn, G.W. and Murai, N. (1991). Molecular basis of imidazolinone herbicide resistance in Arabidopsis thaliana var Columbia. Plant Physiology, 97: 1044-1050. [DOI:10.1104/pp.97.3.1044] [PMID] [PMCID]
34. Shabani, A., Zebarjadi, A., Mostafaei, A., Mohsen, S. and Poordad, S.S. (2016). Identification of drought stress responsive proteins in susceptible genotype of chickpea (Cicer arietinum L.). Plant Genetic Researches, 3(1): 1-12 (In Persian). [DOI:10.29252/pgr.3.1.1]
35. Shaner, D.L., Lindenmeyer, R.B. and Ostlie, M.H. (2012). What have the mechanisms of resistance to glyphosate taught us?. Pest Management Science, 68: 3-9. [DOI:10.1002/ps.2261] [PMID]
36. Sharma, S. (2017). Genetic Variation for Tolerance to Herbicide Imazethapyr in Lentil (Lens culinaris Medik). Archives of Agronomy and Soil Science, 64(13): 1818-1830. [DOI:10.1080/03650340.2018.1463519]
37. Singh, S., Singh, I., Kapoor, K., Gaur, P., Chaturvedi, S., Singh, N. and Sandhu, J. (2014) Chickpea in Broadening the Genetic Base of Grain Legumes. Springer, Berlin Heidelberg, DE. [DOI:10.1007/978-81-322-2023-7_3]
38. Tahmasbali, M., Darvishzadeh, R. and Fayaz Moghaddam, A. (2020). Estimating breeding value of agronomic traits in oriental tobacco genotypes under broomrape stress and normal conditions. Plant Genetic Researches, 7(1): 103-126 (In Persian). [DOI:10.52547/pgr.7.1.7]
39. Tan, S., Evans, R.R., Dahmer, M.L., Singh, B.K. and Shaner, D.L. (2005). Imidazolinone‐tolerant crops: history, current status and future. Pest Management Science, 61: 246-257. [DOI:10.1002/ps.993] [PMID]
40. Taran, B., Warkentin, T., Vandenberg, A. and Holm, F. (2010). Variation in chickpea germplasm for tolerance to imazethapyr and imazamox herbicides. Canadian Journal Of Plant Science, 90: 139-142. [DOI:10.4141/CJPS09061]
41. Toker, C., Uzun, B., Ceylan, F. and Ikten, C. (2014) Chickpea in Alien Gene Transfer in Crop Plants, Volume II. Springer, Berlin Heidelberg, DE. [DOI:10.1007/978-1-4614-9572-7_6]
42. Vencill, W.K., Nichols, R.L., Webster, T.M., Soteres, J.K., Mallory-Smith, C., Burgos, N.R., Johnson, W.G. and McClelland, M.R. (2012). Herbicide resistance: toward an understanding of resistance development and the impact of herbicide-resistant crops. Weed Science, 60: 2-30. [DOI:10.1614/WS-D-11-00206.1]
43. Wang, J.G., Lee, P.K.M., Dong, Y.H., Pang, S.S., Duggleby, R.G., Li, Z.M. and Guddat, L.W. (2009). Crystal structures of two novel sulfonylurea herbicides in complex with Arabidopsis thaliana acetohydroxyacid synthase. The FEBS Journal, 276: 1282-1290. [DOI:10.1111/j.1742-4658.2009.06863.x] [PMID]
44. Wexler, P., Anderson, B.D., Gad, S.C., Hakkinen, P.B., Kamrin, M., De Peyster, A., Locey, B., Pope, C., Mehendale, H.M. and Shugart, L.R. (2014) Encyclopedia of Toxicology. Academic Press, US National Library of Medicine, Bethesda, MD, USA.
45. Yadav, S.S. and Chen, W. (2007) Chickpea Breeding and Management. CABI, Wallingford, UK. [DOI:10.1079/9781845932138.000]
46. Yasin, J., Al‐Thahabi, S., Abu‐Irmaileh, B., Saxena, M. and Haddad, N. (1995). Chemical weed‐control in chickpea and lentil. International Journal of Pest Management, 41: 60-65. [DOI:10.1080/09670879509371923]
47. Yu, Q., Collavo, A., Zheng, M.-Q., Owen, M., Sattin, M. and Powles, S.B. (2007). Diversity of acetyl-coenzyme A carboxylase mutations in resistant Lolium populations: evaluation using clethodim. Plant Physiology, 145: 547-558. [DOI:10.1104/pp.107.105262] [PMID] [PMCID]
ارسال پیام به نویسنده مسئول



XML   English Abstract   Print


Download citation:
BibTeX | RIS | EndNote | Medlars | ProCite | Reference Manager | RefWorks
Send citation to:

Sohrabi S M, Mousavi S K. Investigating The Genetic Resistance of Some Iranian Chickpea (Cicer arietinum L.) Cultivars to Pursuit Herbicide. pgr 2023; 9 (2) :95-108
URL: http://pgr.lu.ac.ir/article-1-278-fa.html

سهرابی سید محسن، موسوی سید کریم. بررسی مقاومت ژنتیکی برخی ارقام نخود (.Cicer arietinum L) ایرانی به علف‌کش‌ پرسوئیت. پژوهش های ژنتیک گیاهی. 1401; 9 (2) :95-108

URL: http://pgr.lu.ac.ir/article-1-278-fa.html



بازنشر اطلاعات
Creative Commons License این مقاله تحت شرایط Creative Commons Attribution-NonCommercial 4.0 International License قابل بازنشر است.
دوره 9، شماره 2 - ( 1401 ) برگشت به فهرست نسخه ها
پژوهش های ژنتیک گیاهی Plant Genetic Researches
Persian site map - English site map - Created in 0.07 seconds with 40 queries by YEKTAWEB 4657